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如何將細(xì)胞凍存和復(fù)蘇

時(shí)間:2019/4/15閱讀:2420
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細(xì)胞凍存及復(fù)蘇的基本原則是慢凍快融,實(shí)驗(yàn)證明這樣可以大限度的保存細(xì)胞活力。目前細(xì)胞凍存多采用甘油或二甲基亞砜作保護(hù)劑,這兩種物質(zhì)能提高細(xì)胞膜對水的通透性,加上緩慢冷凍可使細(xì)胞內(nèi)的水分滲出細(xì)胞外,減少細(xì)胞內(nèi)冰晶的形成,從而減少由于冰晶形成造成的細(xì)胞損傷。復(fù)蘇細(xì)胞應(yīng)采用快速融化的方法,這樣可以保證細(xì)胞外結(jié)晶在很短的時(shí)間內(nèi)即融化,避免由于緩慢融化使水分滲入細(xì)胞內(nèi)形成胞內(nèi)再結(jié)晶對細(xì)胞造成損傷。細(xì)胞復(fù)蘇是一簡單的試驗(yàn)操作,但操作中有許多需要注意的事項(xiàng),在實(shí)驗(yàn)操作中注意細(xì)小問題,才能使復(fù)蘇后的細(xì)胞狀態(tài)保持良好,針對細(xì)胞復(fù)蘇,1. 可以提前把需要的體積的培養(yǎng)液放到培養(yǎng)瓶里,擰松瓶蓋,放到孵箱里半小時(shí)到1小時(shí); 2. 為防止凍存管在升溫時(shí)爆裂等,可以在放入水浴前就實(shí)現(xiàn)在超凈臺里把蓋子擰松一下然后再擰上; 3. 水浴溫度40℃應(yīng)該也沒問題,但正規(guī)的protocol上從來都只說37℃。
一、凍存和復(fù)蘇的原則:慢凍快融
當(dāng)細(xì)胞冷到零度以下,可以產(chǎn)生以下變化:細(xì)胞器脫水,細(xì)胞中可溶性物質(zhì)濃度升高,并在細(xì)胞內(nèi)形成冰晶。
如果緩慢冷凍,可使細(xì)胞逐步脫水,細(xì)胞內(nèi)不致產(chǎn)生大的冰晶;相反,結(jié)晶就大,大結(jié)晶會造成細(xì)胞膜、綱胞器的損傷和破裂。復(fù)蘇過程應(yīng)快融,目的是防止小冰晶形成大冰晶,即冰晶的重結(jié)晶。
二、慢凍程序
1.  標(biāo)準(zhǔn)程序:采用細(xì)胞凍存器
當(dāng)溫度在-25 ℃以上時(shí),  1~2 ℃/min;
當(dāng)溫度達(dá)-25 ℃以下時(shí), 5~10 ℃/min;
當(dāng)溫度達(dá)-100℃時(shí),可迅速放入液氮中。
2.  簡易程序:將冷凍管(管口要朝上)放入紗布袋內(nèi),紗布袋系以線繩,通過線繩將紗布袋固定于液氮罐罐口,按每分鐘溫度下降1~2 ℃的速度,在40 min內(nèi)降至液氮表面過夜,次晨投人液氮中。
3.  傳統(tǒng)程序:冷凍管置于4℃ 10 分鐘→ -20℃ 30 分鐘→ -80℃ 16~18 小時(shí)(或隔夜) → 液氮槽長期儲存。
三、低溫保護(hù)劑的應(yīng)用
在細(xì)胞凍存時(shí)加入溫保護(hù)劑,能大大提高凍存效果。
常用的低溫保護(hù)劑是DMSO,它是一種滲透性保護(hù)劑,可迅速透入細(xì)胞,提高胞膜對水的通透性,降低冰點(diǎn),延緩凍結(jié)過程,能使細(xì)胞內(nèi)水分在凍結(jié)前透出細(xì)胞外,在胞外形成冰晶,減少胞內(nèi)冰晶,從而減少冰晶對細(xì)胞的損傷。
四、細(xì)胞凍存方法
1.  預(yù)先配制凍存液
(1)10%DMSO + 細(xì)胞生長液(20%血清+基礎(chǔ)培養(yǎng)液)
(2)10%甘油+ 細(xì)胞生長液(20%血清+基礎(chǔ)培養(yǎng)液)
2.  取對數(shù)生長期細(xì)胞,經(jīng)胰酶消化后,加入適量凍存液, 用吸管吹打制成細(xì)胞懸液(1×106 ~ 5 ×106細(xì)胞/ml)。
3.  加入1 ml細(xì)胞于凍存管中,密封后標(biāo)記冷凍細(xì)胞名稱和冷凍日期。液氮長期保存。
五、保存細(xì)胞的復(fù)蘇方法
1.  快速解凍
凍存細(xì)胞從液氮中取出后,立即放入37℃水浴中,輕輕搖動冷凍管,使其在1 分鐘內(nèi)全部融化(不要超過3 分鐘)。
2.  解凍后的細(xì)胞可直接接種到含*生長培養(yǎng)液的細(xì)胞培養(yǎng)瓶中直接進(jìn)行培養(yǎng),24小時(shí)后再用新鮮*培養(yǎng)液替換舊培養(yǎng)液,以去除DMSO。
3.  如果細(xì)胞對冷凍保護(hù)劑特別敏感
解凍后的細(xì)胞應(yīng)先通過離心去除冷凍保護(hù)劑,然后再接種到含*生長培養(yǎng)液的培養(yǎng)瓶中。

 

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